A l'aide de ce formulaire, vous pouvez faire une pré-demande, déclaration d'intention à l'équipe SETE de mise à disposition de ressources, vous permettant ainsi de maximiser vos chances d'en obtenir l'accès en permettant une meilleure organisation en amont. Une demande complète devra par la suite être formulée.
Les champs obligatoires sont identifiés par une astérisque (*).
La SETE est un établissement agréé pour l’utilisation d’animaux à des fins scientifiques et bénéficie à ce type d’un encadrement technique, réglementaire et capacitaire. Les modèles animaux étudiés sont : poissons, amphibiens et reptiles.
Sur une surface d’environ 300 m², l’animalerie comporte
8 salles d’élevages dédies aux modèles poissons, amphibiens et reptiles
La Plateforme de Phénotypage est une plateforme créée récemment et toujours en développement. Elle a pour objectif de centraliser les équipements, les connaissances et les techniques de phénotypage (physiologique, morphologique te comportementale) utilisés à la SETE et les mettre au service des différents équipes.
Un ingénieur permanent donne support aux utilisateurs lors des expériences et assure la gestion de ces équipements.
La Plateforme de Phénotypage a un accès privilégié aux Animaleries centrales ainsi qu’aux Plateaux Techniques des Laboratoires de la SETE pour développer ses activités.
Actuellement la Plateforme de Phénotypage est équipée pour la réalisation de différents protocoles :
1) Protocoles métaboliques de respirométrie de petits vertébrés, invertébrés et microorganismes aquatiques
Système FoxBox (Sable Systèm) pour les mesures de respirométrie en flux continu
Système OXY-4-SMA trace (PreSens) pour les mesures de respirométrie à volume constant
Système SensorDish® Reader (PreSens) pour les mesures de respirométrie à volume constant de petits organismes sur plaques de 24 puits
Système Fire-Sting O2 (PyroScience) pour les mesures de spirométrique à volume constant chez les vertébrés aquatiques
2) Protocoles de préférence thermique des vertébrés aquatiques et terrestres
Arènes avec gradient thermique/UV pour vertébrés aquatiques et terrestres
Micro-capteurs intelligents de température sans fil
Système automatisé d’analyse de vidéo
3) Protocoles comportementaux
Arènes climatisées
Arènes de dispersion
Système automatisé de d’analyse de vidéo
Chambres d’acclimatation
Contact
Le responsable de cette plateforme est Pau Molina Vila.Pour toute question, envoyer un mail à : Cette adresse e-mail est protégée contre les robots spammeurs. Vous devez activer le JavaScript pour la visualiser.
Les Plateaux Techniques des Laboratoires (i.e. PTLs) sont composés de tous les laboratoires et de leurs équipements communs présents à la Station d’Écologie Théorique et Expérimentale de Moulis (i.e. SETE).
Ces plateaux ont pour objectif d’héberger et accompagner les différents projets scientifiques développés au sein de la SETE en mettant à disposition des locaux, des équipements et des instruments pour la conception et la conduite des plans expérimentaux.
Les PTLs sont composés de 4 services laboratoires équipés pour l’expérimentation en Biologie Moléculaire, Microbiologie, Biochimie et en Écologie (cf. unités des tri et pesée) ainsi que des services transversaux aidant au bon fonctionnement de ceux-ci comme des laveries et des zones de cryoconservation.
Biologie Moléculaire
Le laboratoire de biologie moléculaire renferme l’équipement nécessaire à l’extraction des acides nucléiques, ainsi qu’à son amplification et quantification et caractérisation.
Eau Osmosée et Pure
Broyeurs à tubes et à plaques
Thermomixers
Concentrateurs par centrifugation et le vide (Speedvac)
Analyseurs PCR et qPCR
Electrophorèses de différentes tailles, horizontaux pour agarose
Transluminateur
Hotte Chimique à Charbon équipé pour le BET
Sorbonne
Robot Pipeteur de 70 cm équipé entre autre pour les extractions ADN
Parc de Microscope à transmission, droit et inversé, à contraste de phase et Interférentiel (DIC) avec analyse d’image et de Stéréozoom équipées de caméra et d’écran
PSM 1.80 m et 1.20 m
Lecteur de plaque (UV-Visible /fluorescence/Luminescence /plaque pour acides nucléiques)
Centrifugeuse
Four à Micro-ondes
Frigidaire et congélateur -20°C
Laboratoire type L2 spécifique aux études sur Tethrahymena sp.
Lecteur de plaque (UV-Visible /fluorescence) dans une enceinte réfrigérée
PSM 1.80 m
Microscope à transmission et à contraste de phase et macroscope équipé pour l’EPI fluorescence avec analyse d’image pour chaque appareil
Centrifugeuse
Enceintes réfrigérées
Frigidaire et congélateur -20°C
Microbiologie
Le laboratoire de microbiologie est composé de deux salles distinctes, un laboratoire classique ainsi qu’un laboratoire L2, ce dernier servant en particulier aux études comportant le modèle Tétrahymena sp.
Les laboratoires contiennent l’équipement nécessaire à la culture cellulaire ainsi que son phénotypage (ex. observation microscopique, analyse de cinétiques de croissance).
Biochimie
Le laboratoire d’Écologie à vocation à faciliter les premières traitements des échantillons provenant du terrain. Nous trouverons de dans des équipements pour trier, peser et observer des échantillons.
Laveur de plaque
Bain à Ultrasons
Sorbonne
pH-mètre
Balances (10-2, 10-3)
Frigidaire et congélateur -20°C
Balances (10-2, 10-3, 10-5),
Sorbonne
Étuves de séchage
Microscopes et Stéréozoom
Espaces pour le tri des échantillons
Frigidaire et congélateur -20°C
Écologie
Le laboratoire d’Écologie à vocation à faciliter les premières traitements des échantillons provenant du terrain. Nous trouverons de dans des équipements pour trier, peser et observer des échantillons.
liste détaillée des équipements
Du personnel technique propre aux PTLs assurent l’entretien et la maintenance de ces équipements ainsi que la coordination de l’accès aux différents lieux par les utilisateurs.
L’équipe technique des PTLs est composé de
Michèle Huet
Pau Molina
La stratégie scientifique du service est assurée par deux responsables scientifiques
Staffan Jacob
Elvire Bestion
Pour toute question, envoyer un mail à :
Pour accéder aux conditions d’accès aux PTL Cliquez ici.
Deux grottes naturelles sont dédiées à la recherche sur la faune cavernicole et notamment sur le Protée Proteus anguinus, qui y est élevé depuis le début des années 1950.
Cet amphibien des cavernes, dont la peau est totalement dépigmentée, mesure entre 15 et 25 centimètres. Il est aveugle, mais perçoit les vibrations de l’eau, et peut vivre jusqu’à 100 ans.
Le protée, qui vit surtout dans les eaux des grottes karstiques des Alpes dinariques traversant la Slovénie, la Croatie et la Bosnie-Herzégovine, est l’unique vertébré strictement cavernicole d’Europe, espèce d’ailleurs protégée. Les grottes abritant le laboratoire souterrain de Moulis, constituent l’une des rares installations expérimentales du globe dédiées à leur recherche.
En effet, y sont installés des aquariums et des bassins en ciment alimentés par les eaux de la rivière souterraine. Plus d’une trentaine de Protées y sont étudiés (années de naissance et de mort, âges de maturité, sexuelle, cadences de reproduction, nombre d’œufs) afin de comprendre les mécanismes biologiques d’adaptation de ces espèces à leur environnement, inchangé depuis des millions d’années.
Phenotypic traits and genes are the nexus of eco-evolutionary studies. However, it is well known that different selective strengths and directions can simultaneously operate on genes and traits within a population, challenging our ability to correctly interpret evolutionary patterns.
On the one hand, we describe phenotypic traits structure in various taxa, and their potential organization in syndromes, i.e., suites of correlated traits. We relate the described phenotypic strategies to potential fitness benefits or costs. The comparison of closely related species helps us tackle these questions at both the intra- and interspecific levels. Our team specifically studies pollination syndromes in orchids, predatory syndromes in snakes, and dispersal syndromes in lizards and protists. We also study a series of complex traits across all our model species like sociality, cooperation, communication, movement, cognitive ability, senescence, habitat preference and cell organization.
On the other hand, we study the impact of genome structure on phenotypic trait correlations and fitness. Two model systems are being investigated in particular: transposable elements in orchids, and the singular structure of the ciliate macronucleus (e.g. high and variable chromosome copy number). Our long-term objective is to establish multidimensional maps of genomes and phenomes, shedding light on correlations and independencies between a significant number of their dimensions.
Interactions between eco-evolutionary processes in changing environments
Biodiversity response to environmental changes is a timely scientific and societal issue due to global change. However, we are far from accurately predicting the impact of environmental changes on organisms’ persistence because we still lack a comprehensive view of the interactions between the processes at work.
CHANGE assesses how selection on pre-existing or new variation, plasticity and/or dispersal allow organisms to track environmental changes in the short (within a generation and across a few generations) and long term (tens to thousands of generations).
We measure the fitness of organisms in a set of contrasted natural or experimental conditions. In particular, we focus on responses to environmental gradients in long-term field surveys in the Pyrenees and the Cevennes to study, e.g., natural variation in altitude, hypoxia, temperature and land use. We also study habitat fragmentation, climate change, pollution and their interactions by running experiments in nature and in SETE experimental facilities (terrestrial metatron, microcosms).
Molecular bases of adaptation
The ability of organisms to express phenotypes matching changing environments is directly linked to the molecular mechanisms involved.
Genetic, but also non-genetic, modifications can lead to the phenotypic changes that allow organisms to track environmental changes. Linking evolution of complex phenotypes to their molecular bases thus provides key information on the response time and stability of organismal adaptation.
We use whole-genome, transcriptome, and epigenome approaches to relate phenotypic modifications, either fixed or plastic, to their underlying molecular mechanisms. Epigenetic modifications or changes in ploidy (in the macronucleus of ciliates) could particularly allow sub-optimal genotypes to rapidly reach a fitness optimum through plastic changes until genetic assimilation.
We focus on the molecular determinants of traits highly influencing fitness like e.g., cognition in birds or ciliary organization in ciliates.
We use experimental evolution to study the dynamics of genetic and non-genetic modifications. We will especially search for the existence of (epi)genetic constrains that are responsible for phenotypic syndrome evolution in snakes, orchids and ciliates.
Role of intraspecific variability on the dynamics and functioning of populations, communities and ecosystems
The functioning and dynamics of biological systems can be very different depending on phenome and genome assemblages. In addition, some strategies such as rapid growth, species interactions and genomic insertions can ensure short-term success, but long-term vulnerability depending on the global dynamics of populations, communities or ecosystems.
We study the impact of intra- and interspecific variability on the dynamics of biological systems through ecological and evolutionary times.
We relate demography, ecosystem productivity, and species diversification to phenome and/or genome variability.
We especially develop concerted experiments across taxa, labs and countries to gain in the generality of the responses obtained.